在高效液相色谱（HPLC）中，使用的固定相和流动相的选择取决于待分离物质的性质、分析时间、检测波长等。以下是一些常见的固定相和流动相的选择：

正相色谱（Normal Phase Chromatography）：在正相色谱中，固定相是非极性或弱极性的物质，如硅胶、C8或C18反相色谱柱等。流动相是极性溶剂，如水、甲醇、乙腈等。正相色谱常用于分离脂溶性物质，如脂肪酸、胆固醇、烃类化合物等。

反相色谱（Reversed Phase Chromatography）：在反相色谱中，固定相是极性或强极性的物质，如C8或C18硅胶色谱柱。流动相是非极性溶剂，如己烷、庚烷等。反相色谱适用于分离水溶性物质，如肽类、蛋白质、氨基酸等。

在选择固定相和流动相时，还需考虑溶剂的pH值、离子强度等因素。最佳的固定相和流动相组合应该是根据实际需要和样品性质来选择的。

组分的出峰顺序主要取决于样品中各组分与固定相和流动相的相互作用。一般来说，极性较小的组分会比极性较大的组分更快地从固定相上洗脱下来。同时，如果样品中存在多个不同极性的组分，它们的出峰顺序将按照极性从小到大的顺序依次洗脱。

然而，在反相色谱中，出峰顺序则是从极性最大的组分开始，逐渐过渡到极性较小的组分。这是因为反相色谱的固定相是极性的，能够吸附极性较大的组分，而流动相是非极性的，对所有组分都有一定的洗脱能力。因此，随着流动相中极性溶剂的比例逐渐增加，对固定相上吸附的组分的洗脱能力也逐渐增强，从而使得极性较大的组分先被洗脱下来。

此外，离子交换色谱（Ion Exchange Chromatography）也是一种常见的分离方法，主要用于分离带电荷的离子型物质。在离子交换色谱中，固定相是离子交换剂，可以结合或离子化样品中的特定离子，而流动相则是用于将离子从固定相上洗脱下来的溶剂。离子交换色谱的出峰顺序主要取决于样品中各离子与固定相的相互作用，以及流动相的性质和浓度。

总之，在采用HPLC进行分离时，应根据样品的性质和需要选择合适的固定相和流动相组合。对于不同的分离目标，还可以采用不同类型的色谱柱、改变流动相的组成或pH值、添加离子对试剂等方法来优化分离效果。